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根据提供的信息，支原体去除试剂是一种混合制剂，通过抑制DNA和支原体生长所必须的相关蛋白合成来取得良好的支原体清*效果，同时对细胞无伤害。它被设计为对细胞毒性小，不影响后续的细胞实验，包括细胞活力检测和细胞转染等。这表明使用支原体去除试剂去除支原体后，理论上不应该对细胞的转染效率产生负面影响。
此外，支原体污染本身会对细胞的转染效率产生负面影响。研究表明，与未污染的细胞相比，支原体污染的细胞转染后具有较低的基因表达水平。因此，去除支原体后，可以预期细胞的转染效率会得到改善，因为移除了影响细胞正常功能的污染物。
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细胞培养过程中如果发现支原体污染，可以采取以下一些方法尝试去除污染：
1. 抗*素治*：使用针对支原体有效的抗*素，如四环素类、大环内酯类、氟喹诺酮类等。根据搜索结果，可以加入高浓度抗*素进行冲击治*，例如庆大霉素 200ug/ml，四环素10ug/ml，卡那霉素50ug/ml，并维持24-48小时后再换入常规培养液。
2. 加温处理：支原体不耐热，可以将细胞置于41°C中处理5-10小时以杀灭支原体。但需注意，高温也可能对细胞造成伤害，因此需要预先确定对细胞影响较小的处理时间。
3. 使用支原体清除剂：市场上有专门的支原体清除剂，按照产品说明使用。
4. 使用支原体清*培养基：如Procell支原体清*培养基，这类产品含有清*支原体的特殊成分，可以抑制支原体生长并挽救珍贵细胞。
5. 物理方法：一些实验室采用过滤的方法，使用0.22μm或更小孔径的滤膜过滤培养基和试剂，以阻止支原体的侵入。
6. 细胞传代：在一些情况下，通过细胞传代可能有助于减少支原体的污染程度。
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细胞培养中支原体污染会对实验结果产生多方面的影响，具体包括：
1. 细胞生长受影响：支原体污染可能导致细胞生长速度减慢，甚至停滞。
2. 细胞形态改变：支原体感*的细胞可能会出现形态的改变，如细胞体积增大、形态不规则等。
3. 细胞功能改变：支原体污染会影响细胞的代谢、增殖、分化等生理功能。
4. 细胞产物改变：支原体感*可能影响细胞产生的蛋白质、细胞因子等生物活性物质的表达和分泌。
5. 实验结果不准确：支原体污染会干扰实验结果的准确性，导致实验数据不可靠。
6. 实验重复性差：支原体污染的细胞培养批次间差异大，影响实验的重复性。
7. 影响后续实验：支原体污染的细胞培养产物用于后续实验，如转染、基因编辑等，可能会影响实验效果。
8. 影响细胞培养产物的质量：支原体污染会影响细胞培养产物的质量，如疫苗、生物制品等。
9. 增加研究成本：支原体污染需要花费额外的时间和成本进行检测、处理和重复实验。
支原体检测中的PCR法和LAMP方法各有其优势和劣势，以下是两种方法的比较：
PCR法
优势:
1.高灵敏度：PCR法可以扩增支原体DNA，具有很高的灵敏度。
2.操作简便：PCR操作相对简单，结果准确，速度快，通常3个小时左右即可得到结果。
3.可靠性：PCR法已成为日常细胞培养维护的可靠方法，是细胞样本库保护细胞的方法。
劣势:
1. 样品量需求：相对于某些快速检测方法，PCR可能需要较多的样品量。
2. 检测周期：尽管PCR法相对快速，但在某些情况下，检测周期可能较长。
LAMP法
优势:
1. 设备简单：只需要一个稳定的恒温环境，如恒温水浴或热拟温器，不需要复杂的温度控制设备。
2. 高特异性：LAMP技术采用多个特异性引物，提供了较高的特异性。
3. 结果可视化：LAMP扩增产物可形成肉眼观察的颜色产物，有助于直接观察扩增结果。
劣势:
1. 引物设计复杂：需要设计多个引物，包括外部引物、内部引物和环引物，引物设计较为复杂。
2. 避免污染：由于没有封闭系统，避免污染造成的假阳性是一个问题。
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支原体检测的应用场景非常广*，以下是一些主要的应用领域：
1. 细胞培养：在实验室和生物制品工厂中，细胞培养过程容易受到支原体污染。支原体污染可能导致细胞功能改变，影响实验结果和生物制品的质量。因此，支原体检测在细胞培养的质量控制中至关重要。科研中常用等温扩增的方法简单便捷。
2. 生物制品生产：在生物制品的生产过程中，如疫苗、生物药物等，需要确保产品无支原体污染，以保证其安全性和有效性。监管机构要求在生产的关键阶段进行支原体检测。通常采用qPCR的方式进行。
支原体预防的实验步骤？深圳细胞培养支原体检测试剂多少钱支原体去除之后对细胞检测有无影响？深圳细胞培养支原体检测试剂多少钱
qPCR法，即定量聚合酶链式反应（Quantitative Polymerase Chain Reaction）法，是一种高度灵敏和特异的分子生物学技术，用于检测和定量DNA序列。在支原体检测中，qPCR法的原理主要包括以下几个步骤：
1. DNA提取：首先从待测样本中提取DNA，这可能包括细胞培养上清液或组织样本中的支原体DNA。
2. 设计特异性引物：针对支原体的保守DNA序列，如16S rRNA基因，设计特异性的DNA引物。
3. 荧光标记探针：使用荧光标记的探针，该探针与目标DNA序列互补，能够在PCR扩增过程中与扩增的DNA结合。
4. Ct值确定：Ct值（阈值循环数）是指在PCR反应中，荧光信号强度超过预定阈值的循环次数。Ct值越低，表示样本中支原体DNA的量越多。
5. 定量分析：通过标准曲线法或相对定量法，将Ct值转换为支原体DNA的定量结果。
qPCR法的优势在于其高灵敏度和特异性，能够检测到非常低水平的支原体污染，并且可以在短时间内提供结果，这对于需要快速检测的生物制品生产和细胞培养质量控制非常重要
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